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Estudiante y Reloj
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CARRERA TÉCNICO SUPERIOR EN INGENIERÍA AMBIENTAL
ASIGNATURA MICROBIOLOGIA
    UNIDAD I:Evolución de la microbiología .Estructura bacteriana .Genetica microbiana

Comprende la genética microbiana
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GENÉTICA BACTERIANA: TRANSFORMACIÓN

 

TRANSFERENCIA DE GENES: VERTICAL Y HORIZONTAL

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MECANISMOS DE TRANSFERENCIA HORIZONTAL DE MATERIAL GENÉTICO EN BACTERIAS
 
  • Conjugación
  • Transducción 
  • Transformación 
 

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BACTERIAS NATURALMENTE COMPETENTES 
 
  • Aquellas que son capaces de introducir ADN desnudo a su citoplasma
  • Hasta 2014, alrededor de 82 especies naturalmente competentes:
    • Staphylococcus aureus
    • Streptococcus pneumonie
    • Bacillus subtilis
    • Haemophilus influenzae
    • Neisseria gonorrhoeae
    • Helicobacter pylori, etc.
    • (Johnston et al., 2014; Snyder et al., 2013)

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COMPROBAR LA PUREZA DEL MATERIAL GENÉTICO A INTRODUCIR: PLASMIDO pBABE-GFP)

  • 5169 bp, codifica para resistencia ampicilina AmpR y producción de proteína verde fluorescente.

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ELECTROFORESIS EN GEL: SEPARACIÓN DE BIOMOLÉCULAS
 
  • Distintas moléculas tendrán una velocidad electroforética distinta, asociada a su peso y a la carga que presente en las condiciones fijadas por el buffer, que al interaccionar con la superficie porosa del gel promoverá su separación

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EL BUFFER DE CARGA/COLORANTE DE CARGA= GLICEROL+COLORANTE
 
  • Se mezcla con la muestra.
  • Sus funciones son:
    • Proporciona mayor densidad que le permita migrar dentro del gel
    • Observar el avance de la electroforesis mediante un colorante

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REVELADO DEL GEL


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INTERPRETACIÓN DE BANDAS


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TRANSFORMACIÓN ARTIFICIAL: OBTENCIÓN DE CÉLULAS COMPETENTES


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PROCEDIMIENTO DE ELECTROPORACIÓN


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CARACTERÍSTICAS FENOTÍPICAS 


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EFICIENCIA DE LA TRANSFORMACIÓN: CONCENTRACIÓN INICIAL

 

  • Trazo de Curva de McFarland

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  • Cálculo de limite de detección (X+3σ)

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  • Medir la D.O a 600 nm y determinar la turbidez del cultivo (0.605 ).

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  • Determinar la concentración del cultivo. 
    • Convertir de D.O a UK (Dividir entre 0.02)

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  • Interpolar la concentración de E.coli/mL

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EFICIENCIA DE LA TRANSFORMACIÓN: CONCENTRACIÓN DE COLONIAS TRANSFORMANTES 

  • Cuenta en placa de agar luria+ampicilina Verdes y fluorescentes al UV.

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  • Determinar concentración de colonias transformantes tomando en cuenta el volumen de inoculación (500 µL).

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EFICIENCIA DE LA TRANSFORMACIÓN: CONCENTRACIÓN DEL PLÁSMIDO AGREGADO

  • La absorbancia de la muestra de DNA se determina en el espectrofotómetro a 260 nm (ácidos nucleicos, 280 nm (proteína) y 230 nm (guanidina y otros solubles en fenol).

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  • Para esta caso D.O 260 nm=1.35
  • Multiplicar el valor de absorbancia por el factor de conversión considerando que una unidad de absorbancia a 260nm= 50µg ADN/mL. Debe considerarse la dilución realizada para la medición en caso de ser requerida (1:5, 1:10, etc).

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UTILIDAD DE LA TRANSFORMACIÓN: PROTEÍNAS/ENZIMAS RECOMBINANTES


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PROYECTO-INFORME

CURVA DE MC FARLAND DE REFERENCIA PARA TODOS LOS CASOS
 
  • Obtén la función que te permita relacionar la turbidez en función de la concentración microbiana (microorganismos/mL).
  • Calcula el valor del límite de detección si el valor de los blancos independientes fue de B1=10, B2=11,B3=20, B4=0, B5=2 UK

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EQUIPO 1
 
  • Se realizó el procedimiento para la extracción y purificación del ADN plasmídico del pBABE-GFP a partir de una cepa de Salmonella typhimurium ampR gfp+.
  • Como el analista es inexperto en el área realizó 4 veces el procedimiento. 
  • Indica en cual de ellos tuvo éxito el analista y argumenta. 
  • Dí el peso de cada uno de los fragmentos de DNA extraídos.

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ELECTROTRANSFORMACIÓN
 
  • Se realizó la electrotransformación de Escherichia coli para introducirle el plásmido pBABE-GFP.
  • Para obtener las células electrocompetentes se utilizó un cultivo con una DO600 nm= 0.668
  • Se inocularon 500 µL del cultivo recuperado ( en 1000 µL de medio SOC) después del procedimiento y se sembraron en Agar Luria+ampicilina y se obtuvieron 10 UFC verdes fluorescentes.
  • El plásmido purificado tuvo una D.O 260nm= 0.95, del cual se agregó 1µL.
  • Determina la eficiencia de la transformación.
  • Indica los resultados que se observarían en las pruebas IMViC y en agar Kligler.

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EQUIPO 2
 
  • Se realizó el procedimiento para la extracción y purificación del ADN plasmídico del pBABE-GFP a partir de una cepa de Salmonella typhimurium ampR gfp+.
  • Como el analista es inexperto en el área realizó 3 veces el procedimiento. 
  • Indica en cual de ellos tuvo éxito el analista y argumenta. 
  • Dí el peso de cada uno de los fragmentos de DNA extraídos.

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ELECTROTRANSFORMACIÓN
 
  • Se realizó la electrotransformación de Escherichia coli para introducirle el plásmido pBABE-GFP.
  • Para obtener las células electrocompetentes se utilizó un cultivo con una DO600 nm= 0.56
  • Se inocularon 500 µL del cultivo recuperado ( en 1000 µL de medio SOC) después del procedimiento y se sembraron en Agar Luria+ampicilina y se obtuvieron 22 UFC verdes fluorescentes.
  • El plásmido purificado tuvo una D.O 260nm= 1.2 , del cual se agregaron 1.5 µL.
  • Determina la eficiencia de la transformación.
  • Indica los resultados que se observarían en las pruebas IMViC y en agar Kligler.

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EQUIPO 3
 
  • Se realizó el procedimiento para la extracción y purificación del ADN plasmídico del pBABE-GFP a partir de una cepa de Salmonella typhimurium ampR gfp+.
  • Como el analista es inexperto en el área realizó 3 veces el procedimiento. 
  • Indica en cual de ellos tuvo éxito el analista y argumenta. 
  • Dí el peso de cada uno de los fragmentos de DNA extraídos.

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ELECTROTRANSFORMACIÓN

 

  • Se realizó la electrotransformación de Escherichia coli para introducirle el plásmido pBABE-GFP.
  • Para obtener las células electrocompetentes se utilizó un cultivo con una DO600 nm= 0.63
  • Se inocularon 500 µL del cultivo recuperado ( en 1000 µL de medio SOC) después del procedimiento y se sembraron en Agar Luria+ampicilina y se obtuvieron 58 UFC verdes fluorescentes.
  • El plásmido purificado tuvo una D.O 260nm= 1.34, del cual se agregaron 0.5 µL.
  • Determina la eficiencia de la transformación.
  • Indica los resultados que se observarían en las pruebas IMViC y en agar Kligler.

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EQUIPO 4

  • Se realizó el procedimiento para la extracción y purificación del ADN plasmídico del pBABE-GFP a partir de una cepa de Salmonella typhimurium ampR gfp+.
  • Como el analista es inexperto en el área realizó 4 veces el procedimiento. 
  • Indica en cual de ellos tuvo éxito el analista y argumenta. 
  • Dí el peso de cada uno de los fragmentos de DNA extraídos.

Comprende la genética microbiana      

ELECTROTRANSFORMACIÓN
 
  • Se realizó la electrotransformación de Escherichia coli para introducirle el plásmido pBABE-GFP.
  • Para obtener las células electrocompetentes se utilizó un cultivo con una DO600 nm= 0.54
  • Se inocularon 500 µL del cultivo recuperado ( en 1000 µL de medio SOC) después del procedimiento y se sembraron en Agar Luria+ampicilina y se obtuvieron 25 UFC verdes fluorescentes.
  • El plásmido purificado tuvo una D.O 260nm= 1.62 del cual se agregaron 1.5 µL.
  • Determina la eficiencia de la transformación.
  • Indica los resultados que se observarían en las pruebas IMViC y en agar Kligler.

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EQUIPO 5
 
  • Se realizó el procedimiento para la extracción y purificación del ADN plasmídico del pBABE-GFP a partir de una cepa de Salmonella typhimurium ampR gfp+.
  • Como el analista es inexperto en el área realizó 4 veces el procedimiento. 
  • Indica en cual de ellos tuvo éxito el analista y argumenta. 
  • Dí el peso de cada uno de los fragmentos de DNA extraídos.
 

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ELECTROTRANSFORMACIÓN
 
  • Se realizó la electrotransformación de Escherichia coli para introducirle el plásmido pBABE-GFP.
  • Para obtener las células electrocompetentes se utilizó un cultivo con una DO600 nm= 0.68
  • Se inocularon 500 µL del cultivo recuperado ( en 1000 µL de medio SOC) después del procedimiento y se sembraron en Agar Luria+ampicilina y se obtuvieron 132 UFC verdes fluorescentes.
  • El plásmido purificado tuvo una D.O 260nm= 1.78, del cual se agregaron 2 µL.
  • Determina la eficiencia de la transformación.
  • Indica los resultados que se observarían en las pruebas IMViC y en agar Kligler.

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EQUIPO 6
 
  • Se realizó el procedimiento para la extracción y purificación del ADN plasmídico del pBABE-GFP a partir de una cepa de Salmonella typhimurium ampR gfp+.
  • Como el analista es inexperto en el área realizó 6 veces el procedimiento. 
  • Indica en cual de ellos tuvo éxito el analista y argumenta. 
  • Dí el peso de cada uno de los fragmentos de DNA extraídos.
 

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ELECTROTRANSFORMACIÓN

 

  • Se realizó la electrotransformación de Escherichia coli para introducirle el plásmido pBABE-GFP.
  • Para obtener las células electrocompetentes se utilizó un cultivo con una DO600 nm= 0.70
  • Se inocularon 500 µL del cultivo recuperado ( en 1000 µL de medio SOC) después del procedimiento y se sembraron en Agar Luria+ampicilina y se obtuvieron 12 UFC verdes fluorescentes.
  • El plásmido purificado tuvo una D.O 260nm= 1.90, del cual se agregaron 0.5 µL.
  • Determina la eficiencia de la transformación.
  • Indica los resultados que se observarían en las pruebas IMViC y en agar Kligler.

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EQUIPO 7
 
  • Se realizó el procedimiento para la extracción y purificación del ADN plasmídico del pBABE-GFP a partir de una cepa de Salmonella typhimurium ampR gfp+.
  • Como el analista es inexperto en el área realizó 4 veces el procedimiento. 
  • Indica en cual de ellos tuvo éxito el analista y argumenta. 
  • Dí el peso de cada uno de los fragmentos de DNA extraídos.

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ELECTROTRANSFORMACIÓN
 
  • Se realizó la electrotransformación de Escherichia coli para introducirle el plásmido pBABE-GFP.
  • Para obtener las células electrocompetentes se utilizó un cultivo con una DO600 nm= 0.60
  • Se inocularon 500 µL del cultivo recuperado ( en 1000 µL de medio SOC) después del procedimiento y se sembraron en Agar Luria+ampicilina y se obtuvieron 178 UFC verdes fluorescentes.
  • El plásmido purificado tuvo una D.O 260nm= 1.75, del cual se agregaron 2 µL.
  • Determina la eficiencia de la transformación.
  • Indica los resultados que se observarían en las pruebas IMViC y en agar Kligler.

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MATERIAL DE APOYO

 

  • Obtención de células competentes: transformación artificial, fundamento

https://www.youtube.com/watch?v=7Ul9RVYG5CM

  • Electrotransformación de E. coli-Procedimiento

https://www.youtube.com/watch?v=-z9yiCu2JjM&feature=youtu.be 

  • Electroporación distintos equipos

https://www.youtube.com/watch?v=ulA8xsVji80 

https://www.youtube.com/watch?v=dHMVEQ8Zmlo 

  • Fundamento de electroforesis

https://www.youtube.com/watch?v=R3xBMqLKL5M 

  • Electroforesis en gel de agarosa 

https://www.youtube.com/watch?v=U1g2qt3juZw 

https://www.youtube.com/watch?v=NL1usCc0n38&t=186s 

    UNIDADES
UNIDAD UNIDAD DE PUBLICACION ITEMS DE PUBLICACION
UNIDAD I Evolución de la microbiología .Estructura bacteriana .Genetica microbiana 
ITEM ITEM NOMBRE PUBLICACION TITULO - PAGINA WEB PUBLICACION SUBTITULO - PAGINA WEB
A Explica la importancia de la microbiología
Explica la importancia de la microbiología (CLIC PARA VER CONTENIDO) Explica la importancia de la microbiología
B Describe la morfología y estructura de las bacterias
Describe la morfología y estructura de las bacterias (CLIC PARA VER CONTENIDO) Describe la morfología y estructura de las bacterias
C Conoce la aplicación de las coloraciones bacterianas y métodos de esterilización.
Conoce la aplicación de las coloraciones bacterianas y métodos de esterilización. (CLIC PARA VER CONTENIDO) Conoce la aplicación de las coloraciones bacterianas y métodos de esterilización.
D Comprende la genética microbiana
Comprende la genética microbiana (CLIC PARA VER CONTENIDO) Comprende la genética microbiana
UNIDAD II Nutrición y Metabolismo Microbiano 
ITEM ITEM NOMBRE PUBLICACION TITULO - PAGINA WEB PUBLICACION SUBTITULO - PAGINA WEB
A Evalúa los nutrientes necesarios para que el microorganismo pueda desarrollar y reproducirse
Evalúa los nutrientes necesarios para que el microorganismo pueda desarrollar y reproducirse (CLIC PARA VER CONTENIDO) Evalúa los nutrientes necesarios para que el microorganismo pueda desarrollar y reproducirse
B Comprende y conoce el crecimiento microbiano
Comprende y conoce el crecimiento microbiano (CLIC PARA VER CONTENIDO) Comprende y conoce el crecimiento microbiano
C Determina las necesidades metabólicas para diferenciar los microorganismos
Determina las necesidades metabólicas para diferenciar los microorganismos (CLIC PARA VER CONTENIDO) Determina las necesidades metabólicas para diferenciar los microorganismos
D Comprende la acción de las enzimas en la cadena respiratoria, fermentativa y de los antimicrobianos.
Comprende la acción de las enzimas en la cadena respiratoria, fermentativa y de los antimicrobianos.	(CLIC PARA VER CONTENIDO) Comprende la acción de las enzimas en la cadena respiratoria, fermentativa y de los antimicrobianos.
E Biomediadores y consorcios inmovilizados (Biofiltros y MBR) NO EXISTE PAGINA WEB
UNIDAD III Bacteriología 
ITEM ITEM NOMBRE PUBLICACION TITULO - PAGINA WEB PUBLICACION SUBTITULO - PAGINA WEB
A Describe las características, patogenicidad, vías de transmisión y prevención. Staphylococcus y Streptococcus.
Describe las características, patogenicidad, vías de transmisión y prevención. Staphylococcus y Streptococcus. (CLIC PARA VER CONTENIDO) Describe las características, patogenicidad, vías de transmisión y prevención. Staphylococcus y Streptococcus.
B Describe las características, patogenicidad, vías de transmisión y prevención. Enterobacterias, Clostridium y Bacillus.
Describe las características, patogenicidad, vías de transmisión y prevención. Enterobacterias, Clostridium y Bacillus. (CLIC PARA VER CONTENIDO) Describe las características, patogenicidad, vías de transmisión y prevención. Enterobacterias, Clostridium y Bacillus.
C Describe las características, patogenicidad, vías de transmisión y prevención. Vibrio, Brucella, Pseudomona y Listeria.
Describe las características, patogenicidad, vías de transmisión y prevención. Vibrio, Brucella, Pseudomona y Listeria. (CLIC PARA VER CONTENIDO) Describe las características, patogenicidad, vías de transmisión y prevención. Vibrio, Brucella, Pseudomona y Listeria.
D Describe las características, patogenicidad, vías de transmisión y prevención. Campylobacter, Yersinia y Helicobacter pylori.
Campylobacter, Yersinia y Helicobacter pylori. (CLIC PARA VER CONTENIDO) Campylobacter, Yersinia y Helicobacter pylori.
E Micorremediación (Hongos ligninolíticos) en suelos pesticidas NO EXISTE PAGINA WEB
UNIDAD IV Mohos y levaduras. Virus 
ITEM ITEM NOMBRE PUBLICACION TITULO - PAGINA WEB PUBLICACION SUBTITULO - PAGINA WEB
A Describe las características, estructuras y reproducción de los hongos
Describe las características, estructuras y reproducción de los hongos (CLIC PARA VER CONTENIDO) Describe las características, estructuras y reproducción de los hongos
B Describe las características diferenciales de los géneros de levaduras
Describe las características diferenciales de los géneros de levaduras (CLIC PARA VER CONTENIDO) Describe las características diferenciales de los géneros de levaduras
C Describe las características, diferenciales de los géneros de mohos.
Describe las características, diferenciales de los géneros de mohos. (CLIC PARA VER CONTENIDO) Describe las características, diferenciales de los géneros de mohos.
D Comprende las características generales y peligrosidad de los virus.
Comprende las características generales y peligrosidad de los virus. (CLIC PARA VER CONTENIDO) Comprende las características generales y peligrosidad de los virus.
UNIDAD V Proyecto Integrador: Escalado Biotecnológico 
ITEM ITEM NOMBRE PUBLICACION TITULO - PAGINA WEB PUBLICACION SUBTITULO - PAGINA WEB
A Planteamiento: Diseño microbiológico de un biorreactor aeróbico NO EXISTE PAGINA WEB
B Cálculo de la Edad del Lodo, Oxígeno Disuelto y F/M (Alimento/Microorganismo) NO EXISTE PAGINA WEB
C Selección de cepas, inóculos y condiciones de temperatura/pH NO EXISTE PAGINA WEB
D Sustentación técnica de la escalabilidad comercial de la biotecnología NO EXISTE PAGINA WEB
    BIBLIOGRAFIA

I Unidad Didáctica

  • DIAZ, R y Colab. 2003. Manual Práctico de Microbiología, 2da Edic.; Edit.; Masson.
  • GRANADOS,P. RAQUEL Y VILLAVERDE, P. CARNEN. 2003. Microbiología, tomo I 1era Edic.; Edit.; Thoson
  • KONEMAN W. Allen 2006 Diagnostico microbiológico. 6ta. Ed. Editorial medica panamericana S.A.
  • http://www.icmsf.iit.edu/
  • http://www.fda.gov/
  • http://www.aoac.org/

II Unidad Didáctica

  • ALBERT, C. ESCOLA, M. 2002. Método de análisis microbiológico. Madrid. Ediciones Diaz de Santos S.A.
  • GAMAZO, C. y Colb. 2005. Manual Práctico de Microbiología. 3era edic.; Edit.; Massot.
  • GRANADOS, P. RAQUEL Y VILLAVERDE, P. CARMEN. 2007. icrobiología, tomo II, 2da Edic.; Edit.; Thoson.
  • http://www. Infocame.com /
  • http://www. minsa.gob.pe /
  • http://www. conam.gob.pe /

III Unidad Didáctica

  • GARCIA, de microbiologia médica. Mexico
  • LEVINSON, w. 2004. Microbiología e inmunología médica, 8 edic.; Edit.; Interamericana.
  • LEVEAU, J, y BOUIX, M, 2000. Microbiología, 1era Edic. ; Edit. ; Acribía. 
  • http://vm.cfsan.fda.gov/~ebam/bam-toc.html
  • http://www.codexalimentarius.net/web/index_es
  •  http://www.apha.org

IV Unidad Didáctica

  • MURRAY, R. P. Y Colb. 2007. Microbiología. 5ta Edic.; Edit.; Elsevier - España.
  • JAWETZ, M Y ADELBERG. 2001, Microbiología médica de Jawetz, 17 ava edic.; Edit.; Manual Moderno.
  • STUART, W. T. 2001, Microbiología. 1edic.; Edit.; Interamericana.
  • http://www..fao.org/
  • http://www.Infoagro.com /
  • http://www..diba.es/ 
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Describe las características, patogenicidad, vías de transmisión y prevención. Staphylococcus y Streptococcus.
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Campylobacter, Yersinia y Helicobacter pylori.
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Describe las características, estructuras y reproducción de los hongos
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Describe las características diferenciales de los géneros de levaduras
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Describe las características, diferenciales de los géneros de mohos.
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Comprende las características generales y peligrosidad de los virus.
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